Hver av oss har minst en gang i livet lurt på om sterilisering av instrumenter for kirurgiske prosedyrer. Selv om du tok en vanlig nål for å plukke ut en splint og først gned den på kanten av T-skjorten din (i beste scenario bomullsull med alkohol). Mer alvorlige overlevende brenner tuppen av kniven over flammen for deretter å kutte fiendens kule ut av baken deres...
I denne publikasjonen vil jeg fortelle deg hovedpoengene ved å forberede et kirurgisk instrument før du bruker det. Så la oss begynne...
MERK FØLGENDE!
Denne teksten er rettet ved hjelp av mine kolleger og på grunn av mange unøyaktigheter. Det takker vi dem veldig for. Jeg må også be om unnskyldning overfor leserne for feilene som er gjort. I min praksis bruker jeg metoder som involverer bruken ferdige løsninger og spesialutstyr (autoklaver og tørrvarmeovner). Jeg prøvde å beskrive mer eldgamle (og tilgjengelige) metoder, basert på offentlig tilgjengelige kilder, og det er derfor det er så mange unøyaktigheter._______________________________________________________________________________
Jeg vil si med en gang at sterilisering bare er en (siste) del av hele forberedelsen av et kirurgisk instrument. Totalt er det tre slike deler: desinfeksjon, vask* og selve steriliseringen. Jeg ønsker å avklare med en gang. Forskjellen mellom desinfeksjon og sterilisering er at desinfeksjon innebærer ødeleggelse av patogene mikrober (de som forårsaker sykdom), og sterilisering innebærer ødeleggelse av absolutt alle. [ Desinfeksjon er ødeleggelse av alle mikroorganismer. Sterilisering - ødeleggelse av alle mikroorganismer og deres sporer]
* - moderne kirurgi kombinerer desinfeksjon og vasking inn generelt konsept"pre-sterilization forberedelse", men dette gjelder bare termer... essensen endres ikke
Desinfeksjon.
Et nylig brukt instrument er forurenset med blod, puss og andre kroppsvæsker. Han er smittet. Det er veldig farlig å utføre manipulasjoner med det - enhver utilsiktet kutt, punktering eller rett og slett kontakt med skadet hud kan føre til at du blir infisert med en slags ekkel ting. Derfor senkes det brukte instrumentet umiddelbart i et bad med desinfeksjonsmiddel umiddelbart etter operasjonen. I dette tilfellet må det være helt nedsenket i løsningen. En 3 % kloraminløsning (eksponering 40-60 minutter) eller en 6 % hydrogenperoksidløsning (eksponering 90 minutter)* brukes som desinfeksjonsmiddel. Etter desinfeksjon vaskes instrumentet rennende vann for å fjerne desinfeksjonsmiddel. Prosedyren må utføres med hansker (for å beskytte deg mot infeksjon).* - Det er nødvendig å ta hensyn til det faktum at når du behandler (bløtlegger) et stort antall instrumenter, spesielt hvis de er sterkt forurenset med blod eller pus, avtar aktiviteten til desinfeksjonsmiddelløsningen over tid. Men i i dette tilfellet vi vurderer én overlevende, og hans daglige omsetning av instrumenter vil være ubetydelig sammenlignet med et regionsykehus.
Oppvasken.
Nå er ikke verktøyet vårt infisert. Men det er fortsatt "smuss" på den i form av vevsrester og medisiner. Nå må all denne dritten vaskes av. Verktøyet er nedsenket i en spesiell (alkalisk) vaskeløsning, som inkluderer vaskemiddel (vaskepulver), hydrogenperoksid og vann*. Løsningstemperatur 50-60°C, eksponering 20 minutter. Etter dette vaskes instrumentene med børster i samme løsning, og deretter i rennende vann. Disse manipulasjonene må også utføres med hansker for å beskytte deg mot aggressive kjemikalier.Proporsjoner:Etter vask må instrumentet tørkes. Tørking kan utføres naturlig. Nylig, spesielt under påfølgende sterilisering med varmluft, tørkes instrumentene i en tørrvarmeovn ved 80°C i 30 minutter. Etter tørking er instrumentene klare for sterilisering.
Vann- 978 ml.
Hydrogenperoksid (27,5 %)- 17 ml. (!!! - Det er denne høye konsentrasjonen som produseres ved å fortynne 33 % perhydrol.)
Vaskepulver- 5 g.
Desinfeksjonsmidlene og vaskemidlene som jeg beskrev ble brukt i medisin inntil nylig, og for oss har de én fordel - de er mer eller mindre tilgjengelige. Moderne medisin har mange spesialutviklede produkter som kombinerer egenskapene til desinfeksjonsmidler og vaskemidler. Dermed har to separate stadier slått seg sammen til ett, når instrumentet først er nedsenket i løsningen, surgjort, desinfisert der og deretter vasket i det med en børste.
Sterilisering.
Så verktøyet vårt er desinfisert, rent og tørket. Nå er han klar for at vi skal sterilisere ham. Metodene for å utføre det varierer. Det er mange klassifiseringer, men jeg personlig liker å dele dem inn i to typer: varmt Og kald. Valget av steriliseringstype avhenger av typen instrument eller materiale. Ikke glem det Alt som kommer i kontakt med såret bør steriliseres, og hvis du tror at dette bare er en pinsett og en skalpell, så tar du dypt feil. Dette inkluderer gummihansker (en gang de var gjenbrukbare), bandasjer og optisk utstyr (for laparoskopiske operasjoner). Den varme metoden er enklere å bruke og mer pålitelig, men hvordan ser du for deg å steke delikat optikk eller plast/gummi?I denne forbindelse er alle instrumenter som er gjenstand for sterilisering betinget delt inn i grupper:
1. Metall:
a) sløv (pinsett, klemmer, nåleholdere...);
b) piercing og kutting (nåler, skalpeller, saks...);
2. Inneholder plast-/gummikomponenter.
3. Optikk.
Kun instrumenter som tilhører kategori 1.a) kan steriliseres med varmmetoden uten konsekvenser. Når de utsettes for høye temperaturer, blir gjenstander som gjennomborer og skjærer, veldig raskt matte og blir ubrukelige. Selv om det ikke er noen annen utvei, kan de også varmebehandles. Gummihansker tåler også flere sykluser med varm sterilisering.
Varme steriliseringsmetoder:
Brenner og kokerBrenning brukes foreløpig ikke i kirurgiske klinikker for å sterilisere instrumenter. Metoden kan brukes hjemme dersom det er umulig å bruke andre. Brenning av metallverktøy utføres med åpen flamme. Vanligvis plasseres instrumentet på et metallbrett, en liten mengde etylalkohol helles i, og det settes i brann. [ metoden for å tenne alkohol tåler ikke kritikk og kan ikke brukes til sterilisering]
Koking i lang tid var hovedmetoden for sterilisering av instrumenter, men nylig har den vært sjelden brukt, siden denne metoden når en temperatur på bare 100 ° C, noe som ikke er nok til å ødelegge sporebærende bakterier.
Instrumenter kokes i spesielle elektriske sterilisatorer med forskjellige kapasiteter. Åpnede instrumenter (demonterte sprøyter) plasseres på et nett og senkes i destillert vann (eventuelt tilsetning av natriumbikarbonat - opptil 2% løsning).
Vanlig steriliseringstid er 30 minutter fra kokeøyeblikket.
Etter at steriliseringen er fullført, fjernes nettet med instrumenter ved hjelp av spesielle sterile håndtak.
Trykkdampsterilisering (autoklavering)
En autoklav (dampsteriliseringsapparat under trykk) kan varme opp vann ved forhøyet trykk. Dette øker kokepunktet til vann og følgelig temperaturen på dampen til 132,9 ° C (ved et trykk på 2 atmosfærer).
Kirurgiske instrumenter, bandasjer, lin og annet materiale lastes spesielt inn i autoklaven metallbokser- bixah Schimmelbusch. Bixes har sidehull som åpnes før sterilisering. Lokket på boksen er tett lukket.
Etter å ha lastet søppelkassene lukkes autoklaven med et forseglet lokk og de nødvendige manipulasjonene utføres for å starte driften i en viss modus. Driften av autoklaven styres av en trykkmåler og termometer.
Det er tre hovedsteriliseringsmoduser:
ved et trykk på 1,1 atmosfærer - 1 time,
ved et trykk på 1,5 atmosfærer - 45 minutter,
ved et trykk på 2 atmosfærer - 30 minutter.
Etter at steriliseringen er fullført, forblir bixene i den varme autoklaven en stund for å tørke med døren litt åpen. Når du fjerner bixene fra autoklaven, lukker du hullene i veggene på bixene og merker steriliseringsdatoen (vanligvis på et stykke oljeklut festet til bixene). En lukket beholder holder varene i den sterile i 72 timer.
Varmluft (tørr varme) sterilisering
Det aktive middelet i denne steriliseringsmetoden er oppvarmet luft. Sterilisering utføres i spesielle enheter - tørrvarme sterilisatorer.
Instrumentene plasseres på hyllene i sterilisatorskapet og tørkes først i 30 minutter ved en temperatur på 80°C med døren på gløtt. Sterilisering utføres med døren lukket i 1 time ved en temperatur på 180°C. Etter dette, når sterilisatorskapet avkjøles til 50-70°C, åpnes døren litt og ved endelig avkjøling tømmes kammeret med sterile instrumenter.
Sterilisering i autoklav og tørrvarmeovn er for tiden den viktigste og mest pålitelige måten å sterilisere kirurgiske instrumenter på.
I denne forbindelse har sykehus vanligvis spesielle sentrale steriliseringsavdelinger (CSD), der, ved hjelp av disse to metodene, steriliseres de mest enkle og hyppigst brukte instrumentene fra alle avdelinger på sykehuset (sprøyter, kanyler, enkle kirurgiske sett, sonder, katetre, etc.) .
Kaldsteriliseringsmetoder:
StrålingssteriliseringAntimikrobiell behandling kan utføres ved bruk av ioniserende stråling (gammastråler), ultrafiolette stråler og ultralyd. Sterilisering med gammastråler er mest brukt i vår tid.
Isotopene Co60 og Cs137 brukes. Dosen av penetrerende stråling må være svært betydelig – opptil 20-25 μGy, noe som krever overholdelse av spesielt strenge sikkerhetstiltak. I denne forbindelse utføres strålingssterilisering i spesielle rom og er en fabrikksteriliseringsmetode (den utføres ikke direkte på sykehus).
Sterilisering av instrumenter og andre materialer utføres i forseglede pakker og, hvis sistnevnte er intakte, oppbevares i opptil 5 år. Forseglet emballasje gjør praktisk oppbevaring og bruk av verktøy (du trenger bare å åpne pakken). Metoden er gunstig for sterilisering av enkle engangsinstrumenter (sprøyter, suturmateriale, katetre, prober, blodtransfusjonssystemer, hansker osv.) og blir stadig mer utbredt. Dette forklares i stor grad av det faktum at under strålesterilisering går egenskapene til gjenstandene som steriliseres ikke tapt i det hele tatt.
Gasssterilisering
Gasssterilisering utføres i spesielle forseglede kamre.
Steriliseringsmidlet er vanligvis: formaldehyddamp (formaldehydtabletter plasseres i bunnen av kammeret [ paraform]) eller etylenoksid. Instrumenter plassert på et nett anses som sterile etter 6-48 timer (avhengig av komponentene i gassblandingen og temperaturen i kammeret).
Særpreget trekk metoden er minimum dårlig innflytelse på kvaliteten på instrumenter, og derfor brukes metoden først og fremst til sterilisering av optiske, spesielt presise og kostbare instrumenter.
I motsetning til strålesterilisering, brukes metoden direkte på sykehus.
Sterilisering med antiseptiske løsninger
Sterilisering med løsninger av kjemiske antiseptika, samt stråling og gasssterilisering, refererer til kaldsteriliseringsmetoder og fører ikke til sløving av instrumenter, og brukes derfor til behandling primært av skjærende kirurgiske instrumenter.
For sterilisering brukes hovedsakelig tre løsninger: trippelløsning*, 96° etylalkohol [ etylalkohol bør bare være 70°, siden denne konsentrasjonen mest effektivt dreper mikroorganismer] og 6 % hydrogenperoksid. Nylig har en alkoholløsning av klorheksidin, pervomur og andre blitt brukt til kaldsterilisering av optiske instrumenter.
Trippelløsning:
karbolsyre- 3 g,
formalin- 20 g,
soda- 15 g,
vann- 1000 ml.
For kaldsterilisering er instrumentene fullstendig nedsenket i en åpen (eller demontert) form i en av de spesifiserte løsningene. Når de er dynket i alkohol og trippelløsning, anses instrumenter som sterile etter 2-3 timer, i hydrogenperoksid - etter 6 timer.
Jeg anser denne metoden for å være den mest optimale for bruk "i felten".
Noe av informasjonen (i form av ferdig tekst) er hentet av meg fra denne siden. Jeg kan anbefale ham til alle som er interessert i kirurgi. Informasjonen er godt systematisert, presentert i en tilgjengelig form og ikke for spesialisert. Om kirurgi i generelle termer.
Takk for din oppmerksomhet.
Sterilisering utføres i to trinn: det første trinnet er pre-steriliseringsbehandling, det andre er direkte sterilisering.
Pre-steriliseringsforberedelse inkluderer desinfeksjon, vask og tørking. På grunn av den høye faren for spredning av AIDS og utførelse av operasjoner på pasienter som har hatt hepatitt, er reglene for pre-steriliseringsforberedelse endret og likestilt med metoder for behandling av instrumenter, som gir en garanti for ødeleggelse av humant immunsviktvirus. Instrumenter etter purulente operasjoner for anaerob infeksjon, pasienter som gjennomgikk innen 5 senere år hepatitt, samt risikoen for AIDS, behandles separat fra andre. Umiddelbart etter operasjonen blir instrumentene nedsenket i desinfeksjonsmidler:
- - 3 % kloraminløsning i 40-60 minutter eller 6 % hydrogenløsning:
- - peroksid - i 90 minutter, 0,5 % polydez-løsning - i 60 minutter, kombinert instrumentdesinfeksjonsmiddel - i 60 minutter.
Etter desinfeksjon overføres instrumentene til en vaskeløsning (vann, vaskepulver og hydrogenperoksid) ved en temperatur på 50°C i 20 minutter, deretter vaskes hvert instrument med en børste i demontert form og vaskes under rennende vann. Stadiene og modusene for rengjøringsinstrumenter er presentert i tabellen. 1.
Tabell 1
Stadier og moduser for pre-sterilisering rengjøring av instrumenter kombinert med desinfeksjon med incrasept 10 A
Kvaliteten på pre-steriliseringsbehandlingen kontrolleres ved å teste azopyram-, fenolftalein- og benzidinprøver for tilstedeværelse av restkomponenter vaskemiddel. blod og fett. Minst 1 % av partiet med instrumenter som samtidig behandles er underlagt kontroll. Den mest praktiske industrielle indikatoren er forseglede rør som inneholder pulver - en blanding av sukrose og vinsyre ved 180 °C blir pulveret flytende.
I tillegg gjennomføres kvalitetskontroll av førsteriliseringsbehandling av Epidemiologisk sanitetssenter en gang i kvartalet. Hvis testen er positiv, gjennomgår hele partiet med instrumenter gjentatt pre-steriliseringsbehandling.
Neste trinn er å tørke instrumentene i en tørrvarmeovn ved en temperatur på 80°C i 20 minutter.
Valget av steriliseringsmetode avhenger av typen kirurgiske instrumenter som skal steriliseres.
Alle generelle kirurgiske instrumenter er konvensjonelt delt inn i fire grupper:
- 1) metall - skjæring (skalpeller, saks, suturnåler, etc.);
- 2) ikke-skjærende: sprøyter, injeksjonsnåler, klemmer, etc.;
- 3) gummi og plast: katetre, sonder, drenering, etc.;
- 4) optisk: laparoskop, gastroskop, cystoskop, etc.
Sterilisering av kirurgiske metallinstrumenter
og glassprodukter produseres på følgende måter:
Tørr varmluftsterilisering- aerosterilisering utføres i tørrvarmeovner. Demonterte instrumenter og sprøyter legges i spesielle metallnett eller pakkes i kraftpapir og steriliseres ved en temperatur på 180-200°C i 1 time. Produkter sterilisert i kraftpapir forblir sterile i 3 dager, og i åpne masker skal brukes umiddelbart etter sterilisering. For å kontrollere sterilisering er den mest praktiske industrielle indikatoren forseglede rør som inneholder pulver - en blanding av sukrose og vinsyre ved 180 °C blir pulveret flytende.
For dampsterilisering instrumentene er plassert i en Schimmelbusch-boks (fig. 1). Beholderen er tett lukket med et lokk, som er festet til boksens kropp med et hengsel, og lukkes med en lås. Det er hull rundt omkretsen av boksen som åpnes og lukkes ved hjelp av et bevegelig metallbelte, festet med en spesiell lås. Bixes settes i autoklaver og steriliseres ved et trykk på 1,1 atm - 60 minutter, 1,5 atm - 45 minutter, 2 atm - 30 minutter. Holdbarhet i beholdere med filter er 3 dager. , uten filter - 24 timer Materialet som skal steriliseres legges løst i boksene slik at dampen trenger fritt inn i hele innholdet.
Ris. 1.
Sterilisering av engangsinstrumenter utføres i forseglede poser ved bruk av ioniserende stråling (uluchi), ultrafiolette stråler og ultralyd. Foreløpig foretrekkes sterilisering med y-stråler. For disse formålene brukes isotopene 60 Co og | 37 C. Sterilisering skal utføres i samsvar med sikkerhetstiltak i fabrikken. Hvis pakkene som y-ray sterilisering ble utført i forblir forseglet, opprettholdes steriliteten i 5 år.
Steriliseringsbokser utstyrt med antibakterielle filtre (KSPF) blir utbredt, hvor holdbarheten til sterilt materiale kan økes til 1 måned. Hvis esken er åpnet, kan det sterile materialet i den kun brukes den dagen.
Koking som steriliseringsmetode brukes foreløpig ikke og refererer til desinfeksjon.
Sterilisering av skjære- og piercingsinstrumenter utført i en fabrikk ved bruk av y-stråler, gass og kalde kjemiske metoder ved bruk av antiseptika. I garderober steriliseres skjære- og stikkeinstrumenter i tørrvarmeovner.
Kjemiske steriliseringsmetoder inkluderer sterilisering i steriliseringskamrene til en luft ett- eller to-kammer sterilisator med en kapasitet på 80 dm 3 eller mer med formalindamp.
Formalin plasseres i bunnen av kammeret med en hastighet på 10 g per 10 dm 3 kamre, steriliseringstid - 16 timer gassmetode instrumenter som har ebonittbase steriliseres: teleskoper, alle laparoskopiske instrumenter, instrumenter med optikk, spesielt presise og kostbare instrumenter Før gasssterilisering desinfiseres laparoskopiske instrumenter i en 3 % aldesonløsning ved å skylle i én beholder. Deretter blir de bløtlagt i den andre beholderen i 1 time og etter den tiden skylles de under rennende vann for å fjerne desinfeksjonsmidler.
Kjemisk sterilisering utføres ved bruk av flytende antiseptika: en trippelløsning av 96% etylalkohol, en 6% løsning av hydrogenperoksid, et kombinert desinfeksjonsmiddel, alaminol, bionol, lysacin. Instrumentet er nedsenket i et av de oppførte desinfeksjonsmidlene i henhold til bruksanvisningen.
Før sterilisering vaskes gummirør, katetre, drenasjer med rennende vann, holdes i en time i en 1% løsning av kloramin, vaskes igjen med rennende vann og tørkes. Deretter pakkes de inn i gasbind og steriliseres ved et trykk på 1 atm i 45 minutter.
Sterilisering av hansker for gjenbruk utføres etter deres pre-steriliseringsbehandling. Brukte hansker vaskes under rennende vann og såpe, desinfiseres i en 1% løsning av kloramin eller andre antiseptiske midler i 30 minutter, skylles under rennende vann, tørkes, sjekkes for lekkasjer, drysses med talkum, pakkes inn ett par om gangen i gasbind. og plassert i poser og sterilisert i en autoklav ved et trykk på 1,1 atm i 30 minutter eller 1,5 atm -15 minutter.
For kirurgiske prosedyrer desinfiseres hansker ved å bruke en av følgende metoder:
- 1) i en 4,8% løsning av pervomur - 20 minutter;
- 2) i en hydrogenperoksydløsning ved 50°C - 180 min;
- 3) i en 96% alkoholløsning - 1 5 minutter;
- 4) i en 10% løsning av roccala - 30 minutter;
- 5) i en 2% løsning av kloramin - 2 timer.
Etter desinfeksjon vaskes hanskene to ganger i destillert vann.
Sterilisering av gummi- og plastprodukter kan utføres i autoklaver med damp under et trykk på 1,1 atm - 30 minutter eller 1,5 atm -1 5-20 minutter. Gummi- og plastprodukter til engangsbruk steriliseres i fabrikken ved hjelp av ultrafiolette stråler.
Sterilisering av bandasjer og kirurgisk lin. Sterilisering ved autoklavering - Veldig pålitelig måte. Steriliser i autoklav i Schimmelbusch-beholdere. Oftest steriliseres bandasjer og kirurgisk lin, noen ganger porselen og glass, emaljeservanter osv. under trykk. Før autoklavering legges materialet og tøyet (ikke tett) i binger, og hvis de ikke er tilgjengelige, i lerretsposer eller poser. Hullene på sideveggen av beholderen åpnes før lasting av autoklaven og lukkes etter sterilisering. Varigheten av steriliseringen avhenger av trykkmåleravlesningene: ved 1 atm/126,8° - 30 minutter; ved 2 atm./132,9° - 20 minutter.
Sterilisering med rennende damp utføres enten i en spesiell Koch væske-dampsterilisator, eller ved å bruke en kasserolle eller bøtte med lokk. Vann helles i karet til 1/3 av høyden, en gitterskillevegg settes inn over vannstanden, hvor materialene som skal steriliseres legges i stoffposer eller poser. Etter å ha lukket karet med et lokk, der det skal være flere små hull for damp å slippe ut, slå på oppvarmingen. Begynnelsen av sterilisering betraktes som øyeblikket når damp begynner å komme ut under lokket i en kontinuerlig strøm, når damptemperaturen 100 °. Steriliseringens varighet er minst 30 minutter.
Sterilisering ved stryking sengetøy og dressinger er kun tillatt i tilfeller der andre metoder ikke kan brukes. Vanligvis når jerntemperaturen 150°. Legg først ut og stryk arket som behandlingen skal utføres på, og bøy det deretter med vann nødvendig materiale og stryk det på begge sider, mens du beveger jernet sakte 2-3 ganger på ett sted. Det strøkne linet legges i en steril pose eller pose med en steril pinsett.
Klargjøring av kirurgens hender
Klargjøring av kirurgens hender. Siden hendene til en veterinær konstant er i kontakt med gjenstander som er forurenset med mikroorganismer, er håndforberedelse før operasjon spesielt viktig. veldig viktig. Behandlingen av kirurgens hender består av to stadier:
1. mekanisk rengjøring
2. behandling med antiseptiske og solingsmidler.
Hendene tilberedes ved å bruke en av følgende metoder:
- Olivekovs metode. Hendene vaskes først i 5 minutter varmt vann(40-50°) med børste og såpe. Etter dette, tørk med et grovt håndkle og behandle i 3 minutter med vattpinner fuktet med en alkoholløsning av jod 1:3000. I tillegg behandles de subunguale områdene og neglesengene med en 5% alkoholoppløsning av jod.
- Spasokukotsky-Kochergin-metoden. Hendene vaskes i to kummer med en 0,5 % ammoniakkløsning i fem minutter. Tørk deretter av med et håndkle og behandle med 70° alkohol i fem minutter. De subunguale rommene behandles med en 5% jodløsning;
– Kiyashovs metode er basert på bruk av en 0,5% ammoniakkløsning, der hendene vaskes med børster i fem minutter og tørkes med et håndkle. Fullfører håndforberedelsen ved å behandle med en 30 % løsning av sinksulfat i innen tre minutter, og subungual mellomrom og neglesenger - en ekstra 5% jodløsning.
Ved kastrering av en villsvin ble håndbehandling utført i henhold til Spasokukotsky-Kochergin-metoden.
Sterilisering av kirurgiske instrumenter
Sterilisering av kirurgiske instrumenter. Det finnes kalde og varme metoder for sterilisering av instrumenter. Varme inkluderer: sterilisering ved koking i vann, fylling og andre; kald - sterilisering i Karetnikovs trippelløsning og andre.
Sterilisering ved koking i vann. Det utføres i sterilisatorer. Vaskete instrumenter, sprøyter, nåler og andre kokes i 30 minutter i destillert eller kokt vann.
For å øke steriliseringseffekten kokes instrumentene i en 3% løsning av bikarbonat av brus eller en 0,25% løsning av natriumhydroksid i 10-15 minutter.
Kald metode for sterilisering i trippel Karetnikov-løsning. Løsningen består av 20 gram formolin, 3 gram fenol og 1 liter destillert vann. Eksponering 30 minutter.
Forsterilisering av instrumenter. For nødoperasjoner er det nødvendig å sterilisere instrumenter på forhånd. Foreløpig sterilisering kan utføres ved å bruke Andreev-metoden. Verktøyene legges i en tolags linpose, som er tett bundet og dyppet i en kokende 20% karbondioksidløsning i 15 minutter. Etter dette fjernes posen og henges opp for å la løsningen renne av og tørke.
Koking av instrumenter i en 20 % karbondioksidløsning uten å tørke dem etterpå forårsaker ikke korrosjon. Instrumentene forblir sterile i flere måneder.
For denne operasjonen er sterilisering ved koking i vann mest akseptabelt.
Klargjøring av operasjonsfeltet
Operasjon feltforberedelse består av mekanisk rengjøring, avfetting, antiseptisk behandling, isolering av operasjonsfeltet.
Mekanisk rengjøring inkluderer vask med såpe, fjerning av hår ved barbering eller klipping. Størrelsen på operasjonsfeltet må være tilstrekkelig til å sikre sterile forhold.
Klargjør det kirurgiske feltet ved å bruke en av følgende metoder:
- Grossif-Filonchikov-metoden. Det avfettede kirurgiske feltet er "garvet" og aseptisk med en 5 % jodløsning umiddelbart etter mekanisk rengjøring, og deretter rett før vevssnitt. Intervallet mellom behandlingene bør være minst fem minutter;
- Musemetoden består i det faktum at etter barbering, mekanisk rengjøring og avfetting behandles det kirurgiske feltet med en 10% vandig løsning av kaliumpermanganat.
Under operasjonen ble feltet preparert etter Grossif-Filonchikov-metoden.
Alle kirurgiske instrumenter, i henhold til egenskapene til materialene som brukes og andre kvaliteter, kan deles inn i tre grupper: metall (skjærende og ikke-skjærende), gummi og plast,
optisk. Sterilisering av ikke-skjærende metallinstrumenter
Hovedmetoden for sterilisering er sterilisering med varmluft i en tørrvarmeovn eller i en autoklav under standardforhold. Sterilisering av metallskjæreinstrumenter
Hovedmetoden for sterilisering av skjæreinstrumenter er kald kjemisk metode ved bruk av antiseptiske løsninger. Nylig, i omkledningsrom, steriliseres skjæreinstrumenter, som ikke-skjærende instrumenter, i en tørrvarmeovn, noe som fører til en liten reduksjon i skarpheten, men sikrer absolutt sterilitet.
Det meste på de beste måtene steriliseringer er gasssterilisering og spesielt strålesterilisering under fabrikkforhold. Sistnevnte metode har blitt utbredt ved bruk av engangs skalpellblader og kirurgiske nåler (atraumatisk suturmateriale).
Sterilisering av kirurgiske instrumenter utføres ved koking, autoklavering og antiseptiske stoffer. Ikke-skjærende instrumenter steriliseres ved å koke i en 1-2 % løsning av natriumbikarbonat, som forhindrer oksidasjon av metallet og øker kokepunktet. Du kan koke verktøy i destillert vann.
Instrumenter kan steriliseres ved å legge dem i beholdere eller pakkes inn i ark i en autoklav i 30 minutter. ved et trykk på 02.00. Tørrluftsterilisering brukes også i tørkeskap ved t° 180-200° i 40 minutter. I nødstilfeller kan instrumenter steriliseres ved brenning. Etter å ha plassert dem i et metallbrett, blir de overfylt med alkohol, som settes i brann. Men slik sterilisering forringer instrumentene, og metoden er ikke pålitelig. Kutte verktøy Når de kokes i vann blir de matte, så de steriliseres med en kald metode. Etter vask med børste og såpe senkes de i 96% alkohol i 2 timer. Lavere konsentrasjoner av alkohol forårsaker rust. Sprøyter steriliseres ved å koke i destillert vann i 30 minutter. Sylindre og stempler kokes separat, pakket inn i gasbind. Hvis sprøytene er laget av varmebestandig glass, som tåler temperaturer over 200°, er den beste metoden tørrluftsterilisering ved en temperatur på 200° i 30 minutter. Nålene kokes med dor eller fylles med vann ved hjelp av en sprøyte. Ellers forblir luft i lumen, noe som hindrer vannstrømmen. Nye nåler renses for fett og rengjøres tre ganger i 20 minutter hver. kok i en 2% natriumbikarbonatløsning, bytt vann hver gang. Deretter legges de i bensin i to timer og kokes igjen to ganger i en 2% løsning av natriumbikarbonat. Oppbevar nåler tørt, med mandriner. Demonterte sprøyter og kanyler kan oppbevares i 96 % alkohol i spesielle metallhylstre eller i en glassbeholder.
Sterilisering er prosessen med å eliminere alle former for liv, inkludert smittestoffer (sopp, bakterier, sporer, virus) som er tilstede på overflater og inneholdt i væsker.
Følgende må gjennomgå obligatorisk sterilisering:
Gjenstander som kommer i kontakt med overflaten av sår har kontakt med blod og injiserbare legemidler
Diagnoseutstyr som kommer i kontakt med slimhinner og kan forårsake skade.
Det er tre hovedstadier av sterilisering:
Desinfeksjon
Rengjøring før sterilisering
Sterilisering
Sterilisering oppnås ved bruk av termisk, kjemisk eller radioaktiv behandling.
Kvaliteten på sterilisering avhenger i stor grad av kontakten mellom steriliseringsmidlet og overflaten av instrumentet som steriliseres. Valget av middel er relatert til arten av instrumentet som skal steriliseres.
Steriliseringsprosessen foregår i en spesiell enhet som kalles en sterilisator.
Steriliseringsmetoder
1) Termisk steriliseringsmetode
- Dampsterilisering (autoklavering)
På varmebehandling levende organismer dør. Denne prosessen akselereres ved å tilføre fuktighet, men vanlig damp er ikke tilstrekkelig for sterilisering. Trykk større enn atmosfærisk er nødvendig, noe som vil tillate øke temperaturen på dampen for å termisk ødelegge mikrobielt liv. Damp under trykk forårsaker denaturering og koagulering av protein og dets enzymer i cellene.
Enheten der dampsterilisering skjer kalles en autoklav. Hele autoklavens steriliseringssyklus kan ta fra 15 til 60 minutter, avhengig av trykket, temperaturen og materialet til instrumentene som steriliseres.
Autoklaveringegnet for gjenstander som tåler fuktighet, høytrykk(fra 1 til 3,5 atmosfærer over det ytre miljøet), og også høy temperatur(fra +121°C til +148°C). For eksempel kirurgiske instrumenter.
En utmerket representant for enheter for dampsterilisering er en serie autoklaver Statim . Kompakte kassettsterilisatorer forlenger levetiden til skjøre instrumenter.
- Luftsterilisering (tørrvarmeovn)
Tørr varme i form av varmluft brukes hovedsakelig til sterilisering av gjenstander basert på vannfrie oljer, petroleumsprodukter og pulver, som ikke kan sterilisert av damp og gass. Død av mikrobielle organismer skjer på grunn av oksidasjon og den langsomme prosessen med proteinforbrenning i cellene. I fravær av fuktighet kreves høyere temperaturer under steriliseringsprosessen.
- Mikrobølgesterilisering
Under påvirkning av ikke-ioniserende mikrobølgestråling skapes hypertermiske forhold som forstyrrer livsprosessene til mikroorganismer. Syklustemperaturen er lavere enn ved dampsterilisering. Syklustiden er mye mindre - 30 sekunder. Metallverktøy kan steriliseres hvis den plasseres under delvis vakuum i en glassbeholder. Denne typen sterilisator er perfekt for små steriliseringsvolumer.
2) Kjemisk metode sterilisering
- Gasssterilisering
Etylenoksid. Grunnleggende Steriliseringssyklusen består av fem stadier og tar ca. 2,5 timer, unntatt luftingstid. Gass kommer inn kjemisk reaksjon med aminosyrer, proteiner, DNA og hindrer spredning av mikrobielle organismer.
Denne steriliseringsmetodenEgnet for gjenstander som ikke tåler den høye temperaturen og fuktigheten som kreves for dampsterilisering. På grunn av de lave temperaturforholdene (+30° til +60°C), er denne steriliseringsmetoden godt egnet for medisinsk utstyr med innebygd elektronikk. Ulempen med denne metoden er at den er lett antennelig.
Formaldehyd.Gass dreper mikroorganismerved proteinkoagulering i cellene. Denne metoden Sterilisering er kompleks og mindre effektiv enn andre steriliseringsmetoder. Bruken til sterilisering har stort sett blitt forlatt i USA, Canada og Australia, men den brukes fortsatt i noen land i Europa og Asia.
- Plasmasterilisering
Plasma eren annen materietilstand enn fast, flytende eller gass. Denne tilstanden oppnås ved å skape et sterkt elektrisk eller magnetisk felt. Frie radikaler av hydrogenperoksid samhandler med cellemembraner, enzymer, nukleinsyrer og forstyrrer de vitale funksjonene til mikroorganismer.
Hovedsløyfe Plasmasterilisering består av fire stadier (vakuumdannelse, H2O2-injeksjon, diffusjon, plasmautslipp). Prosessen tar fra 1 til 3 timer.
Denne steriliseringsmetoden er egnetfor gjenstander som ikke tåler den høye temperaturen og fuktigheten som kreves for dampsterilisering.
- Ozonsterilisering
Ozon er form for oksygen. Steriliseringsprosessen skjer gjennom oksidasjon, ødeleggelse av organiske og uorganiske stoffer. Ozon trenger inn i cellemembranen og får den til å eksplodere. Ozon er en ustabil gass, men kan lett genereres fra oksygen. Syklustiden er opptil 60 minutter avhengig av kammerstørrelse eller belastning.
3) Strålingssteriliseringsmetode
Det er mest effektiv metode sterilisering, men er begrenset til kommersiell bruk.
Ioniserende strålingproduserer ioner som slår elektroner ut av atomer. Disse elektronene treffer et tilstøtende atom og enten fester eller slår et elektron ut av det andre atomet. Ionisk energi omdannes til termisk og kjemisk energi. Denne energien forårsaker død av mikroorganismer ved å ødelegge DNA-molekylet, som hindrer celledeling og spredning av biologisk liv. De viktigste kildene til ioniserende stråling er beta-partikler og gammastråler.
Hver metode Sterilisering har sine egne egenskaper. Når man velger en eller annen metode bør man ta hensyn til ev bivirkninger, spesielt når det gjelder sterilisering av ulike elektroniske enheter.
